بهینه‌سازی شرایط رنگبری ملانوئیدین‌ها با پودر کربن فعال و تعیین توزیع وزن مولکولی آن-ها با استفاده از کروماتوگرافی ژل‌تراوایی

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 1 دانشجوی دکتری علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان

2 2 دانشیار گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان

3 3 عضو هیات مدیره موسسه تحقیقات قند اصفهان و دانشیار گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهرکرد

چکیده

ملانوئیدین­های سنتز شده در سیستم مدل گلوکز و گلایسین (به عنوان یک مدل از ترکیبات رنگی موجود در شربت غلیظ چغندر قند) با استفاده از پودر کربن فعال رنگبری شده و به منظور دستیابی به شرایط بهینه رنگبری، از روش آماری سطح پاسخ (RSM) استفاده شد. نتایج به دست آمده نشان داد که شرایط بهینه رنگبری در حداکثر غلظت ملانوئیدین­ها (750 میلی گرم بر لیتر) عبارت بود از: 7 pH= و زمان تماس30 دقیقه. در این شرایط، کارآیی رنگبری در سیستم­های مدل ملانوئیدین­ها و شربت غلیظ چغندر قند با افزودن 1/0 گرم پودر کربن فعال، به ترتیب 07/73 و 93 درصد به دست آمد. خصوصیات سطحی ملانوئیدین­ها و پودر کربن فعال (قبل و پس از جذب سطحی) با استفاده از طیف سنجی تبدیل فوریه مادون قرمز (FTIR) ارزیابی گردید. بررسی سینتیک رنگبری، نشان دهنده پیروی جذب ملانوئیدین­ها از مدل سینتیکی شبه مرتبه اول بود. نتایج ایزوترم­های جذب نشان داد که جذب ملانوئیدین­ها با مدل ایزوترم در حال تعادل لانگمویر مطابقت خوبی داشت. در ادامه، به منظور بررسی اثر فرآیند رنگبری بر توزیع وزن مولکولی ملانوئیدین­ها از روش کروماتوگرافی ژل تراوایی (GPC) استفاده گردید که نشان دهنده توزیع وزن مولکولی این ترکیبات از 7/0 تا 4000 کیلو دالتون بود. در طی رنگبری سیستم­های مدل ملانوئیدین­ها، ترکیباتی با وزن مولکولی 4000 کیلو دالتون، کاملا" برطرف شده در حالی ­که ترکیباتی با وزن مولکولی بیشتر از 230، 7 و 7/0 کیلو دالتون، تمایل کمتری به جذب بر روی کربن فعال نشان دادند. نتایج این بررسی نشان دهنده قابلیت مناسب پودر کربن فعال جهت حذف ناخالصی­های رنگی با وزن مولکولی بالا در شربت غلیظ چغندر قند ­بود.
 
 

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Optimization of process parameters for decolorization of melanoidins using powdered activated carbon and determination of their molecular weight by Gel Permeation Chromatography

نویسندگان [English]

  • S G 1
  • j k 2
  • N H 2
  • M H 3
1 1
2 2
3 3
Acharya J, Sahu JN, Sahoo BK, Mohanty CR and Meikap BC, 2009. Removal of chromium (VI) from wastewater by activated carbon developed from Tamarind wood activated with zinc chloride. Chemical Engineering Journal 150: 25–39.
Amin NK, 2009. Removal of direct blue-106 dye from aqueous solution using new activated carbons developed from pomegranate peel: adsorption equilibrium and kinetics. Journal of Hazardous Materials 165: 52–62.
Asadi M, 2007. Beet Sugar Hand book. pp. 56–65. (ISBN-13: 9780471763475). New Jersey.
Baunsgaard D, Andersson CA, Arndal A and Munck L, 2000. Multi-way chemometrics for mathematical separation of fluorescent colorants and color precursors from spectrofluorometry of beet sugar and beet sugar thick juice as validated by HPLC analysis.Food Chemistry 70: 113-121.                               
Bento LSM and Sa S, 1998a. Study of high molecular weight compounds in sugar using gel-permeation chromatography with an evaporative light scattering detector. Carbohydrate Polymers 37: 257–261.
Coca M, Garcia MT, Gonzalez G, Pena M and Garcia JA, 2004. Study of colored components formed in sugar beet processing. Food Chemestry 86: 421-433.                       
Coca M, Garcia MT, Mato S, Cartón A and González G, 2008. Evolution of colorants in sugarbeet juices during decolorization using styrenic resins. Food Engineering 89: 429-434.
Dolphen R and Thiravetyan P, 2011. Adsorption of melanoidins by chitin nanofibers. Chemical Engineering Journal 166: 890–895.
Gharib-Bibalan S, Keramat J, Hamdami N and Hojjatoleslamy M, 2016. Optimization of Fenton Oxidation Process for the Degradation of Color Precursors in Raw Sugar Beet Juice. Sugar Tech 18: 273-284.
Ho Y.S, McKay G, Wase DAJ and Foster CF, 2000. Study of the sorption of divalent metal ions on to peat. Adsorption Science and Technology 18: 639– 650.
Ibarz A, Garvín A, Garza S and Pagán J, 2009. Toxic effect of melanoidins from glucose–asparagine on trypsin activity. Food and Chemical Toxicology 47: 2071-2075.
ICUMSA (2000) Methods Book, Supplement. Pub: International Commission for Uniform Methods of Sugar Analysis, Method GS2/3-10.
Lagergren S, 1898. Zur theorie der sogenannten adsorption geloster stoffe. Kungliga Svenska Vetenskapsakademiens. Handlingar 24: 1–39.
Lindeman PF and OShea MG, 2004. Colourant removal during clarification and decolourization processes. Proc. Aust. Soc. Sugar Cane Technol 26: 322–329.
Luisa SM, Moure A, Domínguez H and Parajo JC, 2008. Charcoal adsorption of phenolic compounds present in distilled grape pomace. Journal of Food Engineering 84: 156–163.
Miller GL, 1959. Use of dinitrosaIicyIic acid reagent for determination of reducing sugar. Analitical Chemestry 31: 426-428.
Mohajeri, L, Aziz HA, Isa MH and Zahed M.A, 2010. A statistical experiment design approach for optimizing biodegradation of weathered crude oil in coastal sediments. Bioresource Technology 101: 893–900.
Mudoga HL, Yucel H and Kincal NS, 2008. Decolorization of sugar syrups using commercial and sugar beet pulp based activated carbons. Bioresource Technology 99: 3528–3533.
Nasehi MS, Ansari S and Sarshar M, 2012. Removal of dark colored compounds from date syrup using activated carbon: A kinetic study. Journal of Food Engineering 111: 490–495.
Serpen A, Ataç B and Gökmen V, 2007. Adsorption of Maillard reaction products from aqueous solutions and sugar syrups using adsorbent resin. Journal of Food Engineering 82: 342–350.
Simaratanamongkol A and Thiravetyan P, 2010. Decolorization of melanoidin by activated carbon obtained from bagasse bottom ash. Food Engineering 96: 14–17.